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固定包埋組織DNA快速提取試劑he 核酸提取

  • 型   號:40312
  • 價   格:
  • 更新時間:2025-04-22
  • 廠家性質:經銷商

福爾馬林固定或者石蠟包埋組織通過du特裂解液熱處理和蛋白酶K共同作用迅速裂解細胞釋放出基因組DNA,然后基因組DNA在高離序鹽狀態下選擇性吸附于離心柱內硅基質膜,再通過一系列快速的漂洗-離心的步驟,抑制物去除液和漂洗液將細胞代謝物、蛋白等雜質去除,最后低鹽的洗脫緩沖液將純凈基因組DNA從硅基質膜上洗脫。
固定包埋組織DNA快速提取試劑he 核酸提取

固定包埋組織DNA快速提取試劑盒(離心柱型)


固定包埋組織DNA快速提取試劑he 核酸提取

目錄號:40312

目錄編號

包裝單位

40312-50

50次(帶蛋白酶K fen)

40312-100

100次(帶蛋白酶K fen)

40312-200

200次(帶蛋白酶K fen)

適用范圍:

適用于快速提取各種福爾馬林固定和石蠟包埋組織DNA

試劑盒組成、儲存、穩定性:

試劑盒組成

保存

50次

100次

200次

裂解液FTL

室溫

11ml

20ml

40ml

結合液CB

室溫

11ml

20ml

40ml

抑制物去除液IR

室溫

25ml

50ml

100ml

漂洗液WB

室溫

15ml

25ml

50ml

第一次使用前按說明加指ding量乙醇

洗脫緩沖液EB

室溫

15ml

15ml

15ml×2

蛋白酶K fen

(可選)30mg/ml

-20℃

20+10mg

3×20mg

6×20mg

吸附柱AC

室溫

50個

100個

200個

收集管(2ml)

室溫

50個

100個

200個

本試劑盒在室溫儲存12個月不影響使用效果

儲存事項:

1. 結合液CB或者抑制物去除液IR低溫時可能出現析出和沉淀,可以在37℃水浴幾分鐘幫助重新溶解,恢復澄清透明后冷卻到室溫即可使用。

2. 為避免降低活性、方便運輸,提供蛋白酶K為凍干粉狀,收到后,可短暫離心后,10mg/20mg加入0.5ml/1ml滅菌水溶解,因為反復凍融可能會降低酶活性,因此溶解后立即按照每次使用量分裝凍存,-20℃保存。

3. 避免試劑長時間暴露于空氣中產生揮發、氧化、pH值變化,各溶液使用后應及時蓋緊蓋子。

產品介紹:

福爾馬林固定或者石蠟包埋組織通過du特裂解液熱處理和蛋白酶K共同作用迅速裂解細胞釋放出基因組DNA,然后基因組DNA在高離序鹽狀態下選擇性吸附于離心柱內硅基質膜,再通過一系列快速的漂洗-離心的步驟,抑制物去除液和漂洗液將細胞代謝物、蛋白等雜質去除,最后低鹽的洗脫緩沖液將純凈基因組DNA從硅基質膜上洗脫。

產品特點:

1. 離心吸附柱內硅基質膜全部采用進口世界著名公司特制吸附膜,柱與柱之間吸附量差異極小,可重復性好。克服了國產試劑盒膜質量不穩定的弊端。

2. 不需要使用有毒的苯fen等試劑,也不需要乙醇沉淀等步驟。

3. 快速,簡捷,單個樣品操作一般可在30分鐘內完成。

多次柱漂洗確保高純度,OD260/OD280典型的比值達1.7~1.9,長度可達30kb -50kb,可直接用于PCR,Southern-blot和各種酶切反應。

注意事項:

1. 所有的離心步驟均在室溫完成,使用轉速可以達到13,000rpm的傳統臺式離心機,如Eppendorf 5415C 或者類似離心機。

2. 需要自備乙醇(需要準備100%/80%/60%/40%不同濃度)或者二甲苯。

3. 實驗前將需要的水浴先預熱到37℃備用。

4. 結合液CB和抑制物去除液IR中含有刺激性化合物,操作時要戴乳膠手套,避免沾染皮膚,眼睛和衣服。若沾染皮膚、眼睛時,要用大量清水或者生理鹽水沖洗。

5. 洗脫液EB不含有螯合劑EDTA,不影響下游酶切、連接等反應。也可以使用水洗脫,但應該確保批pH大于7.5, pH過低影響洗脫效率。用水洗脫DNA應該保存在-20℃。DNA如果需要長期保存,可以用TE緩沖液洗脫(10mM Tris-HCl,1mM EDTA,pH 8.0),但是EDTA可能影響下游酶切反應,使用時可以適當稀釋。

操作步驟:(實驗前請先閱讀注意事項)

提示:第一次使用前請先在漂洗液WB中加入指ding量無水乙醇,充分混勻,加入后請及時在方框打鉤標記已加入乙醇,以免多次加入!

1. 將組織切片放入離心管子,浸泡在二甲苯中脫蠟約30分鐘(具體時間根據切片厚度調整)。

2. 將切片依次放入100%乙醇/80%乙醇/60%乙醇/40%乙醇/去離子水,每個液體中浸泡10秒鐘重新水化切片。

剛放入100%乙醇時,應該見到切片變白。

3. 顯微鏡觀察下,用刀片切下擬提取DNA的目標組織,放入預先稱重的1.5ml離心管。再次稱重,計算出切片組織重量。

4. 在25-50mg組織中加入200μl裂解液FTL,再加入20μl的蛋白酶K溶液(20mg/ml),立即混勻混勻后置37℃水浴過夜。

5. 再加入10μl的蛋白酶K溶液(20mg/ml),混勻后55℃水浴1-2小時。

此步驟后,不應該見到粗大的組織顆粒了。

6. 加入200μl 結合液CB,立刻渦旋振蕩20秒充分混勻后置70℃水浴10分鐘。

7. 冷卻后加入100μl 異丙醇,立刻渦旋振蕩30秒充分混勻,此時可能會出現絮狀沉淀。

8. 用1毫升的槍頭吸取混合物,將混合物加入一個吸附柱AC中,(吸附柱放入收集管中)13,000rpm離心60秒,倒掉收集管中的廢液。

如果有不溶組織物可能堵住槍頭,可將槍頭在吸水紙上輕蹭去除不溶物;如果吸上來的混合物少則可以將槍頭和不溶物一起棄去,該做法是為了去除不溶物,以免堵塞離心柱。。

9. 加入500μl抑制物去除液IR,12,000rpm 離心30秒,棄廢液。

10. 加入700μl漂洗液WB(請先檢查是否已加入無水乙醇!),12,000rpm 離心30秒,棄掉廢液。

11. 加入500μl漂洗液WB,12,000rpm 離心30秒,棄掉廢液。

12. 將吸附柱AC放回空收集管中,13,000rpm離心2分鐘,盡量除去漂洗液,以免漂洗液中殘留乙醇抑制下游反應。

13. 取出吸附柱AC,放入一個干凈的離心管中,在吸附膜的中間部位加100μl洗脫緩沖液EB (洗脫緩沖液事先在65-70℃水浴中預熱效果更好),室溫放置3-5分鐘,12,000rpm 離心1分鐘。將得到的溶液重新加入離心吸附柱中,室溫放置2分鐘,12,000rpm離心1分鐘。

洗脫體積越大,洗脫效率越高,如果需要DNA濃度較高,可以適當減少洗脫體積,但是最小體積不應少于50μl,體積過小降低DNA洗脫效率,減少DNA產量。

14. DNA可以存放在2-8℃,如果要長時間存放,可以放置在-20℃。

附錄:另外一種脫蠟方式

1. 將目標組織切片放入離心管,加入1ml 100%二甲苯,渦旋振蕩10秒。瞬間離心把組織全部浸入到二甲苯。

2. 50℃水浴3分鐘熔解石蠟,20-25℃最高速離心2分鐘,收集組織到管底。

3. 小心用移液器吸棄上清二甲苯,注意不要吸到沉淀。

4. 加入1ml無水乙醇,渦旋振蕩,最高速離心2分鐘,小心吸棄上清乙醇。

5. 加入1ml無水乙醇,重復步驟6一遍,盡可能吸棄所有乙醇。

6. 室溫或者37℃ 晾干乙醇10分鐘或直到所有乙醇揮發干。

問題與解決方法:

問題

評論與建議

DNA產量低

*組織塊太大,蛋白酶K消化不wan全-建議:液氮研磨或者盡量將組織切成小塊,或者延長蛋白酶K消化時間至過夜或者在原有消化基礎上另加20μl蛋白酶K消化1-2小時。

*蛋白酶K失效了-建議:收到蛋白酶K后,按照每次使用量分裝凍存,避免反復凍融。

*裂解不wan全或者和異丙醇沒有充分混勻-建議:加入結合液后,和加入蛋白酶K后立即吹打或者渦旋混勻;加入異丙醇后立即吹打或者渦旋混勻才加入吸附柱,如果太粘稠必須渦旋振蕩15秒充分混勻。

組織DNA

降解了

*組織中核酸酶活性導致降解-建議:樣品處理前妥善保存在-20℃,處理量不要過量。

未提取到DNA

*漂洗液WB中忘記加無水乙醇-建議:第一次實驗時,在漂洗液WB中加入指ding量無水乙醇。

洗脫下來的

DNA產量低

*離心柱殘留有較多乙醇或者底部不慎沾有乙醇-建議:確保做了步驟12,否則殘留乙醇會影響洗脫效率。

*使用了水或者其它非優良液體代替洗脫緩沖液-建議:仔細閱讀仔細閱讀注意事項5和步驟13和只使用洗脫緩沖液EB洗脫。

A260吸光值

異常偏高

*一些硅基質膜成分一起洗脫下來,干擾了吸光值-建議:將洗脫的基因組DNA溶液13,000rpm再離心一分鐘,小心取上清使用。

DNA下游酶切

不能切開或者

酶切不wan全

*一些硅基質膜成分一起洗脫下來,抑制了酶切反應-建議:將洗脫的基因組DNA溶液13,000rpm再離心一分鐘,小心取上清使用。

*離心柱殘留有較多乙醇或者底部不慎沾有乙醇抑制了酶切反應-建議:確保做了步驟7,然后空氣中晾幾分鐘,讓殘留乙醇揮發。

 

固定包埋組織DNA快速提取試劑he 核酸提取

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